病理切片是什么？病理切片是取一定大小的病變組織，用病理組織學(xué)方法制成病理切片〔通常將病變組織包埋在石蠟塊里，用切片機切成薄片，再用蘇木精－伊紅（Ｈ－Ｅ）染色〕，用顯微鏡進(jìn)一步檢查病變。病變的發(fā)生發(fā)展過(guò)程，最后作出病理診斷。

它制作時(shí)將部分有病變的組織或臟器經(jīng)過(guò)各種化學(xué)品和埋藏法的處理，使之固定硬化，在切片機上切成薄片，粘附在玻片上，染以各種顏色，供在顯微鏡下檢查，以觀(guān)察病理變化，作出病理診斷，為臨床診斷和治療提供幫助。

那病理切片的制作步驟是怎么樣的呢？一起了解一下：

１．取材

（１）材料新鮮：取材組織愈新鮮愈好，人體組織一般在離體后，動(dòng)物組織在處死后迅速固定，以保證原有的形態(tài)學(xué)結構。

（２）組織塊的大?。核〗M織塊較理想的體積為５０ｐｘ×５０ｐｘ×７．５ｐｘ，以使固定液能迅速而均勻地滲入組織內部，但根據制片材料和目的不同，組織塊的較理想體積也不同，如制作病理外檢、科研切片，其組織塊可以薄?。埃薄担穑纯?，這樣可以縮短固定脫水透明的時(shí)間，若制作教學(xué)切片厚?。埃场保玻担穑?，這樣可以同一蠟塊制作出較多的教學(xué)切片。

（３）勿擠壓組織塊：切取組織塊用的刀剪要鋒利，切割時(shí)不可來(lái)回銼動(dòng)。夾取組織時(shí)切勿過(guò)緊，以免因擠壓而使組織、細胞變形。

（４）規范取材部位：要準確地按解剖部位取材，病理標本取材按照各病變部位、性質(zhì)的不同，根據要求規范化取材。

（５）選好組織塊的切面：根據各器官的組織結構，決定其切面的走向?？v切或橫切往往是顯示組織形態(tài)結構的關(guān)鍵，如長(cháng)管狀器官以橫切為好。

（６）保持材料的清潔：組織塊上如有血液、污物、黏液、食物、糞便等，可用水沖洗干凈后再放入固定液中。

（７）保持組織的原有形態(tài)：新鮮組織固定后，或多或少會(huì )產(chǎn)生收縮現象，有時(shí)甚至完全變形。為此可將組織展平，以盡可能維持原形。

２．固定

（１）小塊組織固定法：這是最常用的方法，從人體或動(dòng)物體取下的小塊組織，須立即置入液態(tài)固定劑中進(jìn)行固定，通常，標本與固定液的比例為１：４～２０，但組織塊不宜過(guò)大過(guò)厚，否則固定液不能迅速滲透。故取組織塊的大小一般為５０ｐｘ×５０ｐｘ×７．５ｐｘ。

（２）注射、灌注固定法：某些組織塊由于體積過(guò)大或固定液極難滲入內部，或需要對整個(gè)臟器或整個(gè)動(dòng)物體進(jìn)行固定。這時(shí)宜采用注射固定或灌注固定法。將固定液注入血管，經(jīng)血管分支到達整個(gè)組織和全身，從而得到充分的固定。

（３）蒸汽固定法：比較小而厚的標本，可采用鋨酸或甲醛蒸汽固定法。如血液涂片，則應在血片未干燥前采用鋨酸或甲醛蒸汽接觸固定。

最常用的固定液有１０％甲醛固定液和９５％乙醇固定液。

３．脫水透明

標本經(jīng)過(guò)固定和沖洗后，組織中含有較多的水分，必須將組織塊內的水分置換出來(lái)，這一過(guò)程叫作脫水。無(wú)論是用石蠟切片，還是用火棉膠切片，都必須除去組織中所含水分，因含水組織與石蠟、火棉膠等包埋材料不相容，常用的脫水劑為一系列不同濃度的乙醇。

脫水的步驟是：８０％、９０％、９５％、１００％各種濃度乙醇２小時(shí)，此過(guò)程可用脫水機自控完成。

丙酮也是一種脫水能力很強的脫水劑，但因其脫水能力很強，對組織有劇烈收縮作用，在制作科研、教學(xué)切片時(shí)一般不用該試劑。因乙醇、丙酮等不溶于石蠟，還要經(jīng)過(guò)一個(gè)能溶于石蠟的溶劑替代過(guò)程稱(chēng)為透明。常用的透明劑有二甲苯、三氯甲烷、水楊酸甲酯等。

４．浸蠟、包埋

（１）使石蠟浸入組織中，取代組織中含有的透明劑。

（２）包埋：將浸蠟后的組織置于融化的固體石蠟中，石蠟凝固后，組織即被包在其中，稱(chēng)蠟塊，此

過(guò)程稱(chēng)為包埋。

５．切片和貼片

（１）修整蠟塊：可視其組織的大小，在組織邊緣約０．１～５ｐｘ處，切去余蠟部分，否則易造成組織

皺縮不平。

（２）準備好切片用具：切片刀、毛筆、眼科鑷子（彎）、漂烘溫控儀

（３）安裝蠟塊：將修好的蠟塊安裝在金屬或木制持蠟器上。

（４）安裝切片刀：將切片刀安裝在切片機的刀臺上，把刀臺上的緊固螺絲旋緊，使切片時(shí)不產(chǎn)生振

動(dòng)，能保持一定的切片厚度。

（５）切片的厚度：切片機的厚度調節器上刻有０～５０μｍ或０～２５μｍ，可任意選擇其厚度，石蠟切片

的厚度一般在４～６μｍ。

（６）切片

（７）鋪片：用眼科鑷子鑷起蠟帶輕輕平鋪在４０～４５℃的水面上，借水的張力和水的溫度，將略皺的

蠟帶自然展平。

（８）貼片、烘片：待切片在恒溫水面上充分展平后，將蠟片撈到載玻片的中段處傾去載玻片上的余

水，置入６０～６５℃恒溫箱內或切片漂烘溫控儀的烘箱內烤片１５～３０分鐘，脫去溶化組織間隙的石蠟。

６．染色和封片

常用的染色方法是蘇木素－伊紅（Ｈｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ－Ｅｏｓｉｎ）染色法，簡(jiǎn)稱(chēng)Ｈ．Ｅ染色法。這種方法對任何固定液固定的組織和應用各種包埋法的切片均可使用。蘇木素是一種堿性染料，可使組織中的嗜堿性物質(zhì)染成藍色，如細胞核中的染色質(zhì)等；伊紅是一種酸性染料，可使組織中的嗜酸性物質(zhì)染成紅色，如多數細胞的胞質(zhì)、核仁等在Ｈ．Ｅ染色的切片中均呈紅色。

Ｈ．Ｅ染色程序如下：脫蠟、脫苯、復水、染色、脫水、透明、封固。

常規蘇木素染色中的對比染色是用伊紅，近年來(lái)在英、美國家的一些實(shí)驗室則采用焰紅（ｐｈｌｏｘｉｎｅ），此外也有用桔黃Ｇ（Ｏｒａｎｇｅ?。牵?、比布里希猩紅（Ｂｉｅｂｒｉｃｈ?。螅悖幔颍欤澹簦?、波爾多紅（Ｂｏｒｄｅａｕｘ?。颍澹洌┑茸鳛閷Ρ热旧?。伊紅為染胞質(zhì)、膠原纖維、肌纖維、嗜酸性顆粒等常用的染料。

那么在常規組織制片中，切片是最重要的技術(shù)之一，其質(zhì)量好壞直接影響標本的觀(guān)察效果。好的切片機是整個(gè)制備過(guò)程的重要環(huán)節，要制備１張好的切片，病理工作人員必須將技術(shù)、知識和技巧進(jìn)行完美的結合。

首先，待切樣品的質(zhì)量是關(guān)鍵因素，而樣品質(zhì)量取決于前期處理工作的準確無(wú)誤，包括固定、脫水、包埋等；必須選擇正確型號的切片機以及合適的鋼刀或一次性刀片；切片時(shí)需認真考慮樣品類(lèi)型、大小、厚度，兼顧操作者的便利性和舒適性。

其次，要切出高質(zhì)量的切片，操作者豐富的經(jīng)驗必不可少。操作者必須懂得切片機的工作原理，對機器進(jìn)行精細調節以達最佳效果；能應對常見(jiàn)故障，消除一些潛在的影響因素；無(wú)論使用鋼刀還是一次性刀片，切緣必須鋒利，且不能有任何缺口或雜質(zhì)附著(zhù)。